We evaluated the anti-biofilm formation and anti-inflammatory activity of Hovenia monofloral honey (HMH) against Enterococcus faecalis. Co-culture of HMH with E. faecalis attenuated the biofilm formation of E. faecalis on a polystyrene surface. In addition, HMH effectively eradicated the established E. faecalis biofilm. HMH significantly attenuated E. faecalis growth but did not affect the production of extracellular polymeric substances on E. faecalis, indicating that reduction of E. faecalis biofilm is a result of HMH-mediated killing of E. faecalis. Furthermore, we found that HMH can effectively attenuate E. faecalis-induced expression of a proinflammatory interleukin-8 (IL- 8) in HT-29 cells. Interestingly, treatment of HMH significantly attenuated the E. faecalis-mediated expression of Toll-like receptor-2 (TLR-2) and its adaptor molecules, myeloid differentiation primary response 88 (MyD88), in HT-29 cells. In addition, E. faecalis-induced mitogen-activated protein kinases (MAPKs) phosphorylation was significantly attenuated by HMH administration. Furthermore, HMH-mediated antiinflammatory efficacy (0.2 mg/mL of HMHs) had an equal extent of inhibitory efficacy as 5 μM of MyD88 inhibitor to attenuate E. faecalis-mediated IL-8 expression in HT-29 cells. These results suggest that HMH could effectively inhibit E. faecalis-mediated gastrointestinal inflammation through regulating the TLR-2/MyD88/MAPKs signaling pathways. Collectively, our data suggest that HMH could be developed as a potential natural agent to control E. faecalis-mediated biofilm formation and inflammation.
Forty gentamicin-resistant isolates of Enterococcus faecalis were selected from various clinical materials, determined their antimicrobial susceptibility, and studied there R-plasmid characteristics and polypeptide patterns. All of the isolates were susceptible to vancomycin. The MICs($\mu$/ml) of antimicrobial agents to the isolates were as follows; the MIC of gentamicin was 128 and $\geq$2040, ampicillin 1 and 1, chlorarmphenicol 2 and 8, erythromycin 32 and 256, and vancomycin 1 and 2. E. faecalis HL-1 strain had 8 plasmid DNA elements, HL-2 and HL-3 strains had 6, HL-4 had 7, HL-5 had 4, and HL-6 had 5. The 51.7 Kb of gentamicin resistance plasmid DNA was conjugally transferred from two strains of E. faecalis HL-1 and HL-6 to S. aureus SK 982. The plasmid transfer frequency between S. aureus SK 982 and E. faecalis HL-1 or E. faecalis HL-6 was 6.3$\times10^{-4} and 3.7$\times10^{-5}$, respectively. Plasmid curing ratio after the treatment of ethidium bromide(10$\mu$/ml) to E. faecalis tarnsconjugants R-1 and R-6 were about 51% and 67%, respectively. The tetracycline gene was located in 2.15 Kb plasmid of E. faecalis HL-1, but it was not found in the E. faecalis HL-6 by Southern blot analyses. The antigenic components of E. faecalis HL-1, HL-6, R-1 and R-6 strains were analyzed by SDS-PAGE and immunoblotting. The E. faecalis strains had 7 to 16 polypeptide bands, however their major proteins were 97.8 and 26.8 Kd. At the Immunoblotting, 97.8, 95.8, 74.8, 63.5, 33.7 and 26.8 Kd polypeptides of the strains showed major antigenic activities with patient's sera infected intra-abdominally with an E. faecalis strain.
Atopic dermatitis (AD) is an inflammatory, relapsing, chronic skin disease and lesions in AD are frequently colonized with Staphylococcus aureus (S. aureus). Activation of T cells and IgE production by staphylococcal enterotoxins B (SEB) plays a crucial role in the pathogenesis of AD. Enterococcus faecalis (E. faecalis) is a nonpathogenic bacterium and produces the probiotic products that have been shown to have inhibitory effects on inflammatory responses. In present study, we carried out to assess the anti-inflammatory role of lyzed E. faecalis against the damaging effects of SEB on AD related immune responses. Furthermore, we attempted to determine whether the co-cultured lyzed E. faecalis can influence the colonization of S. aureus. As a result, we identified the effect of E. faecalis lysate as a potent therapeutic agent for atopic dermatitis (AD). E. faecalis lysate reduces the productions of total IgE and cytokines of AD-related immune cells in response to SEB stimulation. The proliferation of S. aureus was also inhibited by E. faecalis lysate. In conclusions, E. faecalis lysate may improve the skin-defense system disturbed by atopic condition, and may prevent subsequent secondary infection of S. aureus and development of AD.
Bacteriophage endolysins are peptidoglycan hydrolases composed of cell binding domain (CBD) and an enzymatically active domain. A phage endolysin CBD can be used for detecting bacteria owing to its high specificity and sensitivity toward the bacterial cell wall. We aimed to develop a method for detection of Enterococcus faecalis using an endolysin CBD. The gene encoding the CBD of ECP3 phage endolysin was cloned into the Escherichia coli expression vector pET21a. A recombinant protein with a C-terminal 6-His-tag (CBD) was expressed and purified using a His-trap column. CBD was adsorbed onto epoxy magnetic beads (eMBs). The bacterial species specificity and sensitivity of bacterial binding to CBD-eMB complexes were determined using the bacterial colony counting from the magnetic separations after the binding reaction between bacteria and CBD-eMB complexes. E. faecalis could bind to CBD-eMB complexes, but other bacteria (such as Enterococcus faecium, Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Acinetobacter baumannii, Streptococcus mutans, and Porphyromonas gingivalis) could not. E. faecalis cells were fixed onto CBD-eMB complexes within 1 h, and >78% of viable E. faecalis cells were recovered. The E. faecalis recovery ratio was not affected by the other bacterial species. The detection limit of the CBD-eMB complex for E. faecalis was >17 CFU/ml. We developed a simple method for the specific detection of E. faecalis using bacteriophage endolysin CBD and MBs. This is the first study to determine that the C-terminal region of ECP3 phage endolysin is a highly specific binding site for E. faecalis among other bacterial species.
In the present study, we investigated the inhibitory effect of heat-killed Enterococcus faecalis (E. faecalis) and live E. faecalis on benign prostatic hyperplasia (BPH). The BPH rat model was established by administering male rats with testosterone propionate (TP, 5 mg/kg, in corn oil) via subcutaneous injections daily for four weeks after castration. The rats were divided into five groups: Con, corn oil-injected (s.c.) + DW administration; BPH, TP (5 mg/kg, s.c.) + DW administration; BPH+K_EF, TP (5 mg/kg, s.c.) + heat-killed E. faecalis (7.5 × 1012 CFU/g, 2.21 mg/kg) administration; BPH+L_EF, TP (5 mg/kg, s.c.) + live E. faecalis (1 × 1011 CFU/g, 166 mg/kg) administration; BPH+Fi, TP (5 mg/kg, s.c.) + finasteride (1 mg/kg) administration. In both of BPH+K_EF and BPH+L_EF groups, the prostate weight decreased and histological changes due to TP treatment recovered to the level of the Con group. Both of these groups also showed regulation of androgen-signaling factors, growth factors, and apoptosis-related factors in prostate tissue. E. faecalis exhibited an inhibitory effect on benign prostatic hyperplasia, and even heat-killed E. faecalis showed similar efficacy on the live cells in the BPH rat model. As the first investigation into the effect of heat-killed and live E. faecalis on BPH, our study suggests that heat-killed E. faecalis might be a food additive candidate for use in various foods, regardless of heat processing.
Eighty seven strains were isolated from 164 dried marine products(dried squid and dried alaska pollack etc) in Seoul Garak wholesale market. Among 87 isolates, twenty four E. faecalis and 4 E. faecium were identified by API strep kit. Twenty eight strains of E. faecalis, and E. faecium were resistant in streptomycin (95.6%), kanamycin (84.5%), gentamycin (66.7%), cephaloxin (97.8%), ampicillin/sulbactam (88.9%), ticarcillin(66.7%), amikacin (97.8%), sulfonamides (97.8%), ceftriaxone (75.6%), nalidixic acid (100.0%), and cefoxitin (100.0%), and were susceptible in amoxicillin/clavulanic acid(97.8%), chloramphenicol(95.6%), sulfamethoxazole/trimethoprim (97.8%), and tetracycline (71.1%). Also, ten strains of E. faecalis was resistant in $S-K-GM-CF-SAM-TIC-An-S_3-CRO-NA-FOX$ drugs simultaneously. Conclusively, E. faecalis strains from dried marine products were resistant on antibiotic drugs residue.
Enterococcus faecalis is a Gram-positive and facultative anaerobic bacterium that causes many hospital-acquired infections. Novel E. faecalis specific bacteriophage (phage) ECP3 that had been isolated from thirty-four environmental samples and characterized phenotypically and genotypically. ECP3 phage belongs to the family Myoviridae with contractile tail and lysed E. faecalis specifically but other bacteria including Enterococcus faecium. The genome was double-stranded linear DNA and its size was 145,518 bp comprising of 220 open reading frames. The GC content was 35.9%. The genome sequence showed 97% identity in 90% coverage region with Myoviridae phage PhiEF24C. ECP3 is the first E. faecalis-specific Myoviridae phage isolated in Korea which can be a promising antimicrobial agent against E. faecalis infections.
In this study, Enterococcus faecalis BMSE-HMP005 isolated from human breast milk demonstrated antimicrobial effects against multidrug-resistant (MDR) bacterial strains. The bacteriocin produced by E. faecalis BMSE-HMP005 was fractionated using reverse-phase high-performance liquid chromatography. This fraction showed antimicrobial effects against both gram-positive and gram-negative MDR bacteria. No hemolytic reactions were observed. E. faecalis BMSEHMP005 was resistant to vancomycin; however, kanamycin, ampicillin, and erythromycin showed minimum inhibitory concentrations that were lower than the acceptable range provided by the European Food Safety Authority. For artificial gastric juice and bile acid, the survival rates were 98.67% and 95.70%, respectively. These results show the potential utility of E. faecalis BMSE-HMP005 as a probiotic with remarkable antimicrobial effects against MDR bacteria.
Kim, Hanwoo;Park, Indal;Lee, Sangjun;Shin, Dongyoung;Kim, Jiyeun Kate
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2018.10a
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pp.113-113
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2018
Endophthalmitis is a disease that causes ocular inflammation and has a catastrophic effect on eyesight. Recent studies show that Enterococcus faecalis is rapidly increasing causative bacterium of endophthalmitis. It is predicted that the increased endophthalmitis by E. faecalis is presumable due to the high resistance of E. faecalis to moxifloxacin (MFX), which is a common antibiotic used for eye drop. Because of the need for therapeutic agents to overcome this problem, this study sought to explore the feasibility of developing a combination therapy using Orostachys japonicus. The ethylacetate fraction of O. japonicus (OJA) used in this study. Antimicrobial activity was tested 13 E. faecalis strains including one E. faecalis standard strain, eight clinically isolated E. faecalis strains and four quinolone resistant E. faecalis strains using CLSI antibiotic susceptibility test method. Minimal Inhibitory Concentration (MIC) of OJA was confirmed to be $500{\mu}g/ml$ for all 13 strains. Then we tested for the synergistic effect of OJA to MFX using checkboard test method. The MIC of MFX was $0.25{\mu}g/ml$ for the standard strain and 8 for the clinical isolates, and $16{\sim}64{\mu}g/ml$ for the quinolone - resistant strains. When OJA was mixed with MFX, no synergistic effect was observed in all strains, but the antibacterial activity of OJA remained unchanged. Most ocular other strains can be removed by MFX except the MFX resistant E. faecalis, which can be removed by OJA in combination therapy. Therefore, OJA can be a potential candidate for the combined treatment endophthalmitis.
Enterococcus faecalis, a gram-positive bacterium, has been implicated in endodontic infections, particularly in chronic apical periodontitis. Proinflammatory cytokines, including tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), are involved in the pathogenesis of these apical lesions. E. faecalis has been reported to stimulate macrophages to produce TNF-$\alpha$. The present study investigated the mechanisms involved in TNF-$\alpha$ production by a murine macrophage cell line, RAW 264.7 in response to exposure to E. faecalis. Both live and heat-killed E. faecalis induced high levels of gene expression and protein release of TNF-$\alpha$. Treatment of RAW 264.7 cells with cytochalasin D, an inhibitor of endocytosis, prevented the mRNA up-regulation of TNF-$\alpha$ by E. faecalis. In addition, antioxidant treatment reduced TNF-$\alpha$ production to baseline levels. Inhibition of extracellular signal-regulated kinase (ERK) and p38 mitogen-activated protein (MAP) kinase also significantly attenuated E. faecalis-induced TNF-$\alpha$ expression by RAW 264.7 cells. Furthermore, activation of NF-${\kappa}B$ and AP-1 in RAW 264.7 cells was also stimulated by E. faecalis. These results suggest that the phagocytic uptake of bacteria is necessary for the induction of TNF-$\alpha$ in E. faecalis-stimulated macrophages, and that the underlying intracellular signaling pathways involve reactive oxygen species, ERK, p38 MAP kinase, NF-${\kappa}B$, and AP-1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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