Since the anaerobic rumen fungi were discovered in the rumen of a sheep over two decades ago, they have been reported in a wide range of herbivores fud on high fibre diets. The extensive colonisation and degradation of fibrous plant tissues by the fungi suggest that they have a role in fibre digestion. All rumen fungi studied so far are fibrolytic. They produce a range of hydrolytic enzymes, which include the cellulases, hemicellulases, pectinases and phenolic acid esterases, to enable them to invade and degrade the lignocellulosic plant tissues. Although rumen fungi may not seem to be essential to general rumen function since they may be absent in animals fed on low fibre diets, they, nevertheless, could contribute to the digestion of high-fibre poor-quality forages.
Microbial digestion of feed in the rumen involves a sequential attack culminating in the formation of fermentation products and microbial cells that can be utilized by the host animal. Most feeds are protected by a cuticular layer which is in effect a microbial barrier that must be penetrated or circumvented for digestion to proceed. Microorganisms gain access to digestible inner plant tissues through damage to the cuticle, or via natural cell openings (e.g., stomata) and commence digestion from within the feed particles. Primary colonizing bacteria adhere to specific substrates, divide to form sister cells and the resultant microcolonies release soluble substrates which attract additional microorganisms to the digestion site. These newly attracted microorganisms associate with primary colonizers to form complex multi-species consortia. Within the consortia, microorganisms combine their metabolic activities to produce the diversity of enzymes required to digest complex substrates (e.g., cellulose, starch, protein) which comprise plant tissues. Feed characteristics that inhibit the microbial processes of penetration, colonization and consortia formation can have a profound effect on the rate and extent of feed digestion in the rumen. Strategies such as feed processing or plant breeding which are aimed at manipulating feed digestion must be based on an understanding of these basic microbial processes and their concerted roles in feed digestion in the rumen.
The experiment investigated the possibility of using effluent from RUSITEC (rumen simulation technique) inoculated with rumen liquor or cow faeces as sources of micro-organisms for in vitro digestion of forages. Nine forages ${\times}3$ sources of inoculum were used in a factorial arrangement of treatments. Rumen liquor was collected from fistulated sheep and faeces was collected from cows. The RUSITEC apparatus consisted of 4 vessels, 2 vessels were charged with faecal liquor and 2 with rumen liquor. On the 8th day of the experiment RUSITEC effluent were collected to use in in vitro studies. In vitro OMD (g/kg) values using three sources of inoculum (fresh rumen liquor, RUSITEC effluent from rumen liquor or cow faeces) were statistically significant (p < 0.001). The regression relationships between OMD using fresh rumen liquor and RUSITEC effluent were highly significant ($R^2>0.90$). The results suggest that RUSITEC effluent either from rumen liquor or cow faeces can be used as a source of micro-organisms for in vitro digestion of forages.
Among rumen microbes, bacteria play important roles in the biological degradation of plant fiber due to their large biomass and high activity. To maximize the utilization of fiber components such as cellulose and hemicellulose by ruminant animals, the ecology and functions of rumen bacteria should be understood in detail. Recent genome sequencing analyses of representative fibrolytic bacterial species revealed that the number and variety of enzymes for plant fiber digestion clearly differ between Fibrobacter succinogenes and Ruminococcus flavefaciens. Therefore, the mechanism of plant fiber digestion is also thought to differ between these two species. Ecology of individual fibrolytic bacterial species has been investigated using pure cultures and electron microscopy. Recent advances in molecular biology techniques complement the disadvantages of conventional techniques and allow accurate evaluation of the ecology of specific bacteria in mixed culture, even in situ and in vivo. Molecular monitoring of fibrolytic bacterial species in the rumen indicated the predominance of F. succinogenes. Nutritive interactions between fibrolytic and non-fibrolytic bacteria are important in maintaining and promoting fibrolytic activity, mainly in terms of crossfeeding of metabolites. Recent 16S rDNA-based analyses suggest that presently recognized fibrolytic species such as F. succinogenes and two Ruminococcus species with fibrolytic activity may represent only a small proportion of the total fibrolytic population and that uncultured bacteria may be responsible for fiber digestion in the rumen. Therefore, characterization of these unidentified bacteria is important to fully understand the physiology and ecology of fiber digestion. To achieve this, a combination of conventional and modern techniques could be useful.
The studies had been conducted to evaluate the grain processing effects for ruminants on starch digestion, body weight gain and feed efficiency since 1970. This research deals with experimental results on chemical structure, gelatinization, microbial starch digestion in rumen, intestinal starch digestion in rumen, roles of protozoa, intestinal starch digestion of bypass starch, limits to starch digestion in small intestine. The grain processing has different effects on digestion, weight gain and feed efficiency when different grain sources and contents is used, and the quality and quantity of roughage is different. The economical and efficient method of grain processing should be selected considering weight gain and feed efficiency enhancement than digestibility.
Influences of plant phenolic acids and their possible metabolites(non-phenolic aromatic acids involved) in the rumen on the cellulolytic activity of mixed rumen populations were examined by a simple in vitro culture technique. Initial concentrations of aromatic acids were 1, 5, 10 and 20 mM/l. All the tested aromatic acids reduced microbial cellulose digestion especially at the higher initial concentration. P-Coumaric acid, ferulic acid and cinnamic acid, those having unhydrogenated propenoic side chain were more inhibitory than were 3-phenylpropinic acid and phloretic acid, those having hydrogenated propanoic side chain. Lag-time for cellulose digestion was prolonged by former three acids by 16 h. Apparent reduction in p-coumaric acid concentration was observed at 24 h when cellulose digestion began. Volatile fatty acid productions from cellulose fermentation were shifted by former three aromatic acids to produce more acetate and less propionate. This suggests that the selection of celluloytic organisms was induced by these aromatic acids.
Four Luxi beef cattle ($400{\pm}10$ kg) fitted with ruminal, duodenal and ileal cannulas were used in a $4{\times}4$ Latin square to assess the effects of soybean small peptide (SSP) infusion on rumen fermentation, diet digestion and flow of nutrient in the gastrointestinal tract. The ruminal infusion of SSP was 0 (control), 100, 200 and 300 g/d. Ruminal SSP infusion linearly (p<0.01) and quadratically (p<0.01) increased microbial protein synthesis and rumen ammonia-N concentration. Concentrations of total volatile fatty acid were linearly increased (p = 0.029) by infusion SSP. Rumen samples were obtained for analysis of microbial ecology by real-time PCR. Populations of rumen Butyrivibrio fibrisolvens, Streptococcus bovis, Ciliate protozoa, Ruminococcus flavefaciens, and Prevotella ruminicola were expressed as a proportion of total Rumen bacterial 16S ribosomal deoxyribonucleic acid (rDNA). Butyrivibrio fibrisolvens populations which related to total bacterial 16S rDNA were increased (p<0.05), while Streptococcus bovis populations were linearly (p = 0.049) and quadratically (p = 0.020) decreased by infusion of SSP. Apparent rumen digestibility of DM and NDF were (Q, p<0.05; L, p<0.05) increased with infusion SSP. Total tract digestion of DM, OM and NDF were linearly (p<0.01) and quadratically (p<0.01) increased by infusing SSP. The flow of total amino acids (AA), essential amino acids (EAA) and individual amino acids were linearly (p<0.01) and quadratically (p<0.01) increased with infusion SSP. The digestibility of Lysine was quadratically (p = 0.033) increased and apparent degradability of Arginine was linearly (p = 0.032) and quadratically (p = 0.042) increased with infusion SSP. The results indicated that infusion SSP could improve nutrient digestion, ruminal fermentation and AA availability.
The experiment was carried out using fistulated multiparous Holstein Friesian crossbred (75% Holstein Friesian and 25% Red Sindhi) dairy cows in their dry period fed on untreated rice straw to evaluate the nutritive value of local protein feed resources using the in sacco method and in vitro pepsin-pancreatin digestion. Experimental feeds were cottonseed meal (CSM); soybean meal (SBM); dried brewery's grains (DBG); palm kernel meal (PSM); cassava hay (CH); leucaena leaf meal (LLM). Each feedstuff was weighed into duplicate nylon bags and incubated in each of the two rumen fistulated cows for 0, 2, 4, 8, 16, 24, and 48 h. Rumen feed residues from bags of 16 h incubation were used for estimation of lower gut digestibility by the technique of in vitro pepsin-pancreatin digestion. Ruminal ammonia-nitrogen ($NH_3-N$) concentrations did not differ between treatments or time with a mean of 5.5 mg%. Effective degradability of DM of CSM, SBM, DBG, PSM, CH and LLM were 41.9, 56.1, 30.8, 47.0, 41.1 and 47.5%, respectively. Effective degradabilities of the CP in feedstuffs were 49.6, 59.2, 40.9, 33.5, 47.3 and 65.0% for the respective feedstuffs. The CP in vitro pepsin-pancreatin digestibility as ranked from the highest to the lowest were SBM, CSM, LLM, CH, DBG, PSM, respectively. The intestinal and total tract digestion of feedstuffs in the current study were relatively lower than that obtained from previous literature. The results of this study indicate that SBM and LLM were highly degradable in the rumen, while CH, CSM and DBG were less degradable and, hence resulted in higher rumen undegradable protein. Soybean meal and LLM could be used to improve rumen ecology whilst CH, CSM and DBG could be used as rumen by-pass protein for ruminant feeding in the tropics.
Whole lupinus albus seeds were pressure toasted at temperatures of 100, 118 and $136^{\circ}C$ for 3, 7, 15 and 30 min to study rumen degradation and post-rumen digestion and to determine optimal heating conditions for the Dutch dairy feed industry. In sacco nylon bag and mobile bag techniques were employed for rumen and intestine incubations to determine ruminal degradation characteristics and intestinal digestion of crude protein (CP) in 4 lactation rumen cannulated and 4 lactating intestinal cannulated Dutch dairy cows fed 47% hay and 53% concentrate according to Dutch dairy requirements. Measured rumen degradation characteristics were soluble fraction (S), undegradable fraction (U), potentially degradable fraction (D), lag time (T0) and rate of degradation (Kd) of insoluble but degradable fraction. Percentage bypass feed protein (BCP), ruminal microbial protein synthesized based on available nitrogen (N_MP) and that based on available energy (E_MP), true protein supplied to the small intestine (TPSI), truly absorbed BCP (ABCP), absorbed microbial protein (AVP) in the small intestine, endogenous protein losses in the digestion (ENDP), true digested protein in the small intestine (TAP or DVE in Dutch) and degraded protein balance (PDB or OEB in Dutch) were totally evaluated using the new Dutch DVE/OEB System. Pressure toasting decreased (p<0.001) rumen degradability of CP. It reduced S (p<0.05) and Kd (p=0.06), increased D (p<0.05) and U (p<0.01) but did not alter T0 (p>0.05), thus resulting in dramatically increased BCP (p<0.001) with increasing time and temperature from 73.7 (raw) up to 182.5 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Although rumen microbial protein synthesized based on available energy (E_MP) was reduced, true protein (microbial and bypass feed protein) supplied to the small intestine (TPSI) was increased (p<0.001) from 153.1 (raw) to 247.6 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Due to digestibility of BCP in the intestine not changing (p>0.05) average 87.8%, the absorbed BCP increased (p<0.001) from 62.3 (raw) to 153.7 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). Therefore DVE value of true digested protein in the small intestine was significantly increased (p<0.001) from 118.9 (raw) to 197.0 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$) and OEB value of degraded protein balance was significantly reduced (p<0.001) from 147.2 (raw) to 63.1 g/kg DM ($136^{\circ}C/15min$). It was concluded that pressure toasting was effective in shifting degradation of CP of lupinus albus from the rumen to small intestine without changing intestinal digestion. Further studies are required on the degradation and digestion of individual amino acids and on the damaging effects of processing on amino acids, especially the first limiting amino acids.
Anaerobic chytridiomycete fungi are now well recognized as one of the major components of rumen microflora. Since the discovery of anaerobic fungi, the knowledge upon their morphology and physiology has been accumulated. It is certain that they gave roles in ruminal fiber digestion, although their quantitative contribution to rumen digestion is still unclear. Their role in fiber digestion is complicated by the dietary factors and the interaction with other microorganisms. We aim at reviewing such information in this article. Considerable attention gas been paid to the polysaccharidase of these fungi. Analysis on the fungal genes encoding these enzymes has been performed in several laboratories. This article also covers the genetical analysis of fungal polysaccharidases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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