To determine the optimal conformation of sulfonylureas, the correlation between conformation and hypoglycemic activity of the two sulfonylureas of tolbutamide and chlorpropamide as hypoglycemic agent was studied using an empirical potential function (ECEPP/2) and the hydration shell model in the unhydrated and hydrated states. The conformational energy was minimized from several starting conformations with possible torsion angles in each molecule. The conformational entropy change of each conformation was computed using a harmonic approximation. To understand the hydration effect on the conformation of the molecules in aqueous solution, the contribution of water-accessible volume of each group or atom in the lowest-free-energy conformation was calculated and compared each other. From comparison of the computed lowest-free-energy conformations of two sulfonylureas, it could be suggested that the hydration of sulfonylurea moiety is related to increase the hypoglycemic activity. From the calculation results, it was known that the conformational entropy is the major contribution to stabilize the low-free-energy conformations of two sulfonylureas in unhydrated state. Whereas, in hydrated state, the hydration free energy largely contributes to the total free energies of low-free-energy conformations of tolbutamide and conformational entropy contributes to stabilize the low-free-energy conformations of chlorpropamide. The torsion angles from phenyl ring to urea moiety of the low-free-energy conformations of the two sulfonylureas were shown the nearly regular trend. On the basis of these results, the conformation exhibiting the optimal hypoglycemic activity of sulfonylureas and the binding direction to pancreatic receptor site A could be predicted. Also, according to the side chain lengthening of urea moiety, tolbutamide showed various conformational change. Therefore, steric effect may be important factor in the interaction between sulfonylureas and the putative pancreatic receptor.
Conformational free energy calculations using an empirical potential function (ECEPP/2) and hydration shell model were carried out on the four-4-aminodiphenyl sulfone analogues of 4, 4'-diamino-2' methyldiphenyl sulfone, 4, 2', 4-triaminodiphenyl sulfone, 4, 4'-diaminodiphenyl sulfone, and 4-aminodiphenyl sulfone as antibacterial agents on Mycobacterium lufu. The conformational energy was minimized from starting conformations which included possible combinations of torsion angles in the molecule. The conformational entropy change of each conformation was computed using a harmonic approximation. To understand the hydration effect on the conformation of the molecule in aqueous solution, the contributions of water-accessible volume and the hydration free energy of each group or atom in the lowest-free-energy conformation was calculated and compared each other. From comparison of the computed lowest-free-energy conformations of four analogues with their antibacterial activities, it is known that the conformation and the hydrophobicity of sulfonyl group and its adjacent carbon atom in each compound are the essential factors to show the strong antibacterial activity.
We studied the interaction of 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) with single stranded poly(dA) using optical spectroscopic methods, including absorption, circular dichroism (CD), and fluorescence spectroscopy. The temperature-dependent conformation of poly(dA) was also investigated. The conformation of poly(dA) varied with temperature, which is explained by the stacking-destacking process of the adenine bases, resulting from the sugar conformation. The hypochromicity and red-shift in the absorption spectroscopy, the lack of CD change in the drag absorption region, and the fluorescence behavior, especially a great accessibility of the I2 quencher to the poly(dA)-bound DAPI, suggest that DAPI binds to the outside of poly(dA). The Job plot for the DAPI-poly(dA) mixture demonstrated that a stoichiometry of one DAPI molecule binds to the one phosphate of poly(dA).
The leukocyte NADPH oxidase of neutrophils is a membrane-bound enzyme that catalyzes the production of $O_2^-$ from oxygen using NADPH as an electron donor. Dormant in resting neutrophils, the enzyme acquires catalytic activity when the cells are exposed to appropriate stimuli. During activation, the cytosolic oxidase components $p47^{phox}$ and $p67^{phox}$ migrate to the plasma membrane, where they associate with cytochrome $b_{558}$, a membrane-bound flavohemoprotein, to assemble the active oxidase. The oxidase can be activated in a cell-free system; the activating agent usually employed is an anionic amphiphile such as sodium dodecyl sulfate (SDS). Because $p47^{phox}$ can translocate by itself during activation, the conformational change in $p47^{phox}$ may be responsible for the activation of NADPH oxidase. We show here that the treatment of $p47^{phox}$ with SDS leads to an increase in the reactivity of the sutbydryl group of cysteines toward N-ethylmaleimide, indicating that the conformational change occurs when $p47^{phox}$ is exposed to SDS. We propose that this change in conformation results in the appearance of a binding site through which $p47^{phox}$ interacts with cytochrome $b_{558}$during the activation process.
To satisfy good mechanical and optical properties of polymer-coated film products, it will be indispensable to elucidate the molecular orientation of polymer chains within coating liquids in coating flows. Using hybridized numerical method between computational fluid dynamics (CFD) and Brownian dynamics (BD) simulations can provide the useful information for the better quality control of coated films. Flexible polymer chains, e.g., ${\lambda}$-DNA molecules here, change their conformation according to the flow strength and the flow type. The molecular conformation within the coated film on the web or substrate is quite different, because the polymer chains experience the complicated flow strength and flow types in flow field. Especially in the slot coating flow, these chains are more extended by the extension-like flow field generated in the free surface curvature just beyond the downstream die region. Also, the polymer chain extension beneath the free surface can be affected by the die geometry, e.g., the coating gap, changing flow field.
The binding interactions between human serum albumin (HSA) and the edible food dyes amaranth, tartrazine and sunset yellow have been studied. Intrinsic association constants and the free energy changes associated with dye-protein binding at physiological pH for amaranth and tartrazine, and at two different pH values for sunset yellow have been calculated from ultrafiltration data. The temperature dependence $(20-40^{\circ}C)$ of the intrinsic association constants at pH 7.4 for amaranth-HSA and tartrazine-HSA mixtures have been measured, from which a plot of the van't Hoff isochore exhibits a marked change in slope around $30^{\circ}C$ indicating a possible change in protein conformation. The number of dye binding sites on HSA is reported for all the above conditions. HSA-ligand binding enthalpies have been used in conjunction with the N-B transitional binding enthalpy for HSA, to calculate the enthalpy for the N-B transition when ligands are bound with the protein.
International Journal of Advanced Culture Technology
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v.11
no.2
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pp.323-329
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2023
In this study, Proline pentamer model was used to investigate change in the dihedral angle, intramolecular hydrogen bonding and formation energies during structural optimization. L-Proline (LP, as an imino acid residue) pentamers having four conformation types [β: φ/ψ=t−/t+, α: φ/ψ=g−/g−, PPII: φ/ψ=g−/t+ and Plike: φ/ψ= g−/g+] were carried out by QCC [B3LYP/6-31G(d,p)]. The optimized structure and formation energy were examined for designated structure. In LP, P-like and PPII types did not change by optimization, and β types were transformed into PPII having no H-bond independently of the designated ψ values. PPII was more stable than P-like by about 2.2 kcal/mol/mu. The hydrogen bond distances of d2(4-6) type H-bonds were 1.94 - 2.00Å. In order to understand the processes of the transformations, the changes of φ/ψ, distances of NH-OC (dNH/CO) and formation energies (ΔE, kcal/mol/mu) were examined.
For the Rouse chain composed of infinite number of beads (continuous limit), conformational changes during the creep and creep recovery processes was recently analyzed to reveal the interplay among all Rouse eigenmodes under the constant stress condition (Watanabe and Inoue, Rheol. Acta, 2004). For completeness of the analysis of the Rouse model, this paper analyzes the conformational changes of the discrete Rouse chain having a finite number of beads (N = 3 and 4). The analysis demonstrates that the chain of finite N exhibits the affine deformation on imposition/removal of the stress and this deformation gives the instantaneous component of the recoverable compliance, $J_{R}$(0) = 1/(N-l)v $k_{B}$T with v and $k_{B}$ being the chain number density and Boltzmann constant, respectively. (This component vanishes for N\longrightarrow$\infty$.) For N = 2, it is known that the chain has only one internal eigenmode so that the affinely deformed conformation at the onset of the creep process does not change with time t and $J_{R}$(t) coincides with $J_{R}$(0) at any t (no transient increase of $J_{R}$(t)). However, for N$\geq$3, the chain has N-l eigenmodes (N-l$\geq$2), and this coincidence vanishes. For this case, the chain conformation changes with t to the non-affine conformation under steady flow, and this change is governed by the interplay of the Rouse eigenmodes (under the constant stress condition). This conformational change gives the non-instantaneous increase of $J_{R}$(t) with t, as also noted in the continuous limit (N\longrightarrow$\infty$).X>).TEX>).X>).
1H NMR spectra of 3,3-dimethylpiperidine (1) at -70 to 30 ℃ exhibit gradual change from slow to rapid exchange between two alternate chair forms. The exchange rate constant was determined as a function of temperature by simulating the line shape of the signal from the two methyl groups using the modified Bloch equations. The resulting free energy of activation is ΔG* = 44.4±1.9 kJ mol-1 at 298 K. The 1H NMR spectrum of a D2O or dimethylsulfoxide-d6 (DMSO-d6) solution containing 1 and [SiW11CoⅡO39]6- exhibits separate signals for the free ligand and the complex, indicating that the ligand exchange is slow on the NMR time scale. In D2O the piperidine ring is frozen as a chair form even at room temperature with the cobalt ion bonded to the axial position of the nitrogen atom. When DMSO-d6 is added to the D2O solution, the NMR spectral change suggests that a rapid exchange occurs between the chair form and another conformer. It is proposed that the conformation of ^b1^b coordinated to [SiW11CoⅡO39]6- in DMSO-d6 is close to a twist form.
Eukaryotic translation termination is governed by eRF1 and eRF3. eRF1 recognizes the stop codons and then hydrolyzes peptidyl-tRNA. eRF3, which facilitates the termination process, belongs to the GTPase superfamily. In this study, the effect of the MC domain of eRF1a (eRF1aMC) on the GTPase activity of eRF3 was analyzed using fluorescence spectra and high-performance liquid chromatography. The results indicated eRF1aMC promotes the GTPase activity of eRF3, which is similar to the role of eRF1a. Furthermore, the increased affinity of eRF3 for GTP induced by eRF1aMC was dependent on the concentration of $Mg^{2+}$. Changes in the secondary structure of eRF3C after binding GTP/GDP were detected by CD spectroscopy. The results revealed changes of conformation during formation of the eRF3C GTP complex that were detected in the presence of eRF1a or eRF1aMC. The conformations of the eRF3C eRF1a GTP and eRF3C eRF1aMC GTP complexes were further altered upon the addition of $Mg^{2+}$. By contrast, there was no change in the conformation of GTP bound to free eRF3C or the eRF3C eRF1aN complex. These results suggest that alterations in the conformation of GTP bound to eRF3 is dependent on eRF1a and $Mg^{2+}$, whereas the MC domain of eRF1a is responsible for the change in the conformation of GTP bound to eRF3 in Euplotes octocarinatus.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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