Polymer(Korea) (폴리머)

The Polymer Society of Korea (한국고분자학회)
권호 표지

Interaction of Fibroblast Cells onto Chloric Acid-treated Poly($\alpha$-hydroxy acid) Polymer Surfaces

염소산 처리된 Poly($\alpha$-hydroxy acid)계 고분자 표면과 섬유아세포의 상호작용

  • 이상진 (한양대학교 공업화학과) ;
  • 강길선 (전북대학교 고분자공학과) ;
  • 이진호 (한남대학교 고분자공학과) ;
  • 이영무 (한양대학교 공업화학과) ;
  • 이해방 (한국화학연구소 생체의료고분자팀)
  • Published : 2000.11.01
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Abstract

PLA, PGA and PLGA films were treated with chloric acid mixture solution [70% perchloric acid (HClO$_4$)/potassium chlorate (KClO$_3$) aq. saturated solution, 3 : 2] to increase surface wettability and thus cell compatibility. The surface-treated PLA, PGA, and PLGA films were characterized by the measurement of water contact angle, electron spectroscopy for chemical analysis, and scanning electron microscopy. Surface wettability of chloric acid-treated PLA, PGA, and PLGA film surfaces was gradually increased with increase of treatment time. Unlike EtOH pre-treatment, chloric acid-treated polymer films maintain hydrophilic surface after drying. In cell adhesion test, fibroblasts were cultured on the chloric acid-treated film surfaces for 1 and 2 days. As the surface wettability increased, the cell adhesion on the surface were increased. In conclusion, this study demonstrated that the surface wettability of polymer plays an important role for cell adhesion and proliferation behavior.

본 연구에서는 폴리락타이드 (PLA), 폴리글리콜라이드 (PGA) 그리고 이들의 공중합체인 PLGA 필름을 염소산 혼합용액 [70% 과염소산 (HClO$_4$)/포타슘 클로레이트 (KClO$_3$) 포화 수용액, 3 : 2]으로 처리하여 표면의 젖음성과 세포적합성을 증가시켰다. 표면 처리된 고분자의 표면을 물접촉각 측정과 ESCA, SEM으로 특성결정하였다. 염소산 처리된 PLA, PGA, 및 PLGA의 표면 젖음성은 처리시간이 증가함에 따라 증가되었고 이들 고분자 필름은 기존의 에탄을 전처리와 달리 건조 후에도 친수성 표면을 유지하였다. 세포 점착실험은 섬유아세포를 염소산 처리된 필름의 표면에서 1일 및 2일 배양하였고 표면의 젖음성이 증가함에 따라 세포의 점착도 우세하였다. 결론적으로 본 연구에서는 표면의 젖음성은 세포의 점착과 증식 거동에 중요한 역할을 한다는 것을 증명하였다.

Keywords

References

  1. Science v.260 R. Langer;J. P. Vacanti
  2. Polymer Sci Tech. v.10 G. Khang;I. Jo;J. H. Lee;I. Lee;H. B. Lee
  3. Bioindustry v.22 G. Khang;H. B. Lee
  4. Chem. World v.37 no.3 G. Khang;H. B. Lee
  5. Polymer Sci. Tech. v.10 G. Khang;J. H. Lee;H. B. Lee
  6. Polymer Sci. Tech. v.10 I. Lee;G. Khang;H. B. Lee
  7. Science v.284 N. L’Heureux;L. Germain;L. A. Auger
  8. Science v.284 D. Ferber
  9. J. Biomed. Mater. Res. v.43 S. J. Peter;M. J. Miller;A. W. Yasko;M. J. Yaszemski;A. G.Mikos
  10. Nature v.389 R. P. Lanza;R. Langer;W. L. Chick
  11. Tissue Engineering;Concepts and Application J. J. Yoo;I. W. Lee
  12. Adv. Polymer Sci. v.122 R. C. Thomson;M. C. Wake;M. J. Yaszemski;A. G. Mikos
  13. J. Biomed. Mater. Res. v.27 L. E. Freed;J. C. Marquis;A. Nohria;J. Emmanual;A. G. Mikos;R. Langer
  14. J. Biomed. Mater. Res. v.37 D. J. Mooney;K. Sano;P. M. Kaufmann;K. Majahod;B.Schloo;J. P. Vacanti;R. Langer
  15. Mat. Res. Soc. Symp. Proc. v.394 T. H. Kim;C. Jannetta;J. P. Vacanti;J. Upton;C. A. Vacanti
  16. Tissue Enginering v.1 no.1 M. J. Yaszenski;R. G. Payne;W. C. Hayes;R. Langer;T. B. Aufdemorte;A. G. Mikos
  17. Biotech. Bioeng. v.43 H. Miyoshi;K. Yanagi;H. Fukuda;N. Ohshima
  18. J. Biomed. Mater. Res. Symp. v.1 E. J. Frazza;E. E. Schmitt
  19. Encyclopedic Handbook of Biomaterials and Bioengineering v.1 X. S. Wu
  20. J. Biomed. Mater. Res. v.42 J. Gao;L. Niklason;R. langer
  21. Tissue Engineering v.1 no.3 C. Maauliagrawal;G. G. Niederauer;K. A. Athanasiou
  22. Mat. Res. Soc. Symp. Proc. v.394 Peter X. Ma;R. Langer
  23. Bio/Technology v.12 L. E. Freed;G. Vunjak-Novakovic;R. J. Biron;D. B. Eagles;D. C. Lesnoy;S. K. Barlow;R. Langer
  24. J. Biomed. Mater. Res. v.27 A. G. Mikos;Y. Bao;L. G. Cima;D. E. Ingber;J. P. Vacanti;R. Langer
  25. J. Biomater. Sci. Polymer Edn. v.7 no.1 R. C. Thomson;M. J. Yaszemski;J. M. Powers;A. G. Mikos
  26. Tissue Engineering v.1 no.2 D. J. Mooney;C. Breuer;K. McNamara;J. P. Vacanti;R. Langer
  27. J. Biomed. Mater. Res. v.42 L. D. Harris;B-S Kim;D. J. Moony
  28. Plastic Reconstr. Surg. v.88 C. A. Vacanti;R. Langer;B. Schloo;J. P. Vacanti
  29. J. Biomech. Eng. v.113 L. G. Cima;J. P. Vacanti;C. Vacanti;D. E. Ingber;D. J. Mooney;R. Langer
  30. Polymer(Korea) v.23 no.3 G. Khang;J. H. Jeon;J. C. Cho;H. B. Lee
  31. J. Biomater. Sci. Polymer Edn. v.10 no.3 J. H. Lee;S. J. Lee;G. Khang;H. B. Lee
  32. Korea Polymer J. v.7 no.2 G. Khang;S. J. Lee;J. H. Lee;H. B. Lee
  33. Bio-Med. Mater. Eng. v.9 G. Khang;S. J. Lee;J. H. Lee;Y. S. Kim;H. B. Lee
  34. Biomaterials v.15 A. G. Mikos;M. D. Lyman;L. E. Freed;R. Langer
  35. Polymer(Korea) v.24 no.5 G. Khang;S. J. Lee;J. H. Jeon;J. H. Lee;H. B. Lee
  36. Polymer(Korea) v.23 G. Khang;J. H. Jeon;J. C. Cho;J. M. Rhee;H. B. Lee
  37. Korea Polymer J. v.7 J. C. Cho;G. Khang;J. M. Rhee;Y. S. Kim;J. S. Lee;H. B. Lee
  38. Polymer Preprints v.40 H. B. Lee;G. Khang;J. C. Cho;J. M. Rhee;J. S.Lee
  39. J. Colloid Interface Sci. v.205 J. H. Lee;G. Khang;J. W. Lee;H. B. Lee
  40. J. Biomater. Sci., Polym. Edn. v.9 Y. Iwasaki;K. Ishihara;N. Nakabayashi;G. Khang;J. H. Jeon;J. W. Lee;H. B. Lee
  41. Makromol. Chem., Makromol. Symp. v.118 J. H. Lee;G. Khang;J. W. Lee;H. B. Lee
  42. Biomaterials v.18 J. H. Lee;J. W. Lee;G. Khang;H. B. Lee
  43. Biomaterials Res. v.2 no.1 J. H. Lee;D. K. Kim;G. Khang;J. S. Lee